제    조   사 : Oxoid
유 효 기 간 : 1825일
판 매 상 태 : 판매중
보           관 : 10~30℃
용           도 : 미생물 선택 구별

500g

CM0856B

선택성 첨가제를 넣어 Listeria monocytogenes의 검출을 위한 선택 및 진단 배지이다.

식품공전의 Oxford 한천배지와 동일한 배지이다.

 

Typical Formula* gm/litre
Columbia Blood Agar Base 39
 Aesculin 1
 Ferric ammonium citrate 0.5
 Lithium chloride 15
 pH 7.0 ± 0.2 @ 25°C  
* 성능 표준을 충족하기 위해 조절됨

 

SR0140 : Listeria Selective Supplement (Oxford Formulation)

Vial contents  per vial per litre
Cycloheximide   200mg 400mg
Colistin sulphate 10.0mg 20.0mg
Acriflavine 2.5mg 5.0mg
Cefotetan 1.0mg 2.0mg
Fosfomycin 5.0mg 10.0mg
* vial 500ml 배지 조제에 적합

 

SR0206 : Modified Listeria Selective Supplement (Oxford)

Vial contents per vial per litre
Amphotericin B   5.0mg 10.0mg
Colistin sulphate 10.0mg 20.0mg
Acriflavine 2.5mg 5.0mg
Cefotetan 1.0mg 2.0mg
Fosfomycin 5.0mg 10.0mg
* vial 500ml 배지 조제에 적합 

500ml의 정제수에 27.75g의 CM0856을 현탁하고, 끓여서 완전히 녹인다. 121°C, 15분간 오토클레이브로 멸균한다. 첨가제 SR0140 또는 SR0206을 제품설명서에 따라 70%에탄올 5ml을 넣어 재구성하여 준비한다. 멸균된 배지를 50°C까지 식힌후,  준비된 첨가제를 무균적으로 첨가하고 잘 혼합한 후 멸균 페트리 접시에 붓는다.

분변 및 생물학적 시료

검체를 0.1% Peptone Water (CM0009)에 1:9의 비율로 균질화 한다.

 

직접 표면 평판법

1. 균질화한 시료 0.1ml을 Listeria Selective Medium 평판에 접종한다.

2. 48시간까지 35°C에서 배양한다.

3. 배양 24시간 후 및 47시간 후에 Listeria의 전형적인 집락을 시험한다.

 

선택적 증균법

1. 균질화한 시료를 선택적 증균 액체배지에 넣고 7일까지 30°C에서 배양한다.

2. 24시간 후, 48시간 후, 그리고 7일 후에, 선택 증균 액체 배지 0.1ml을 Listeria Selective Medium 평판에 접종한다.

3. 평판을 48시간까지 35°C에서 배양한다.

4. 24시간, 48시간 배양후에 Listeria의 전형적인 집락을 시험한다.

 

식품 및 환경 검체

분리 방법은 저자, 재료, 권위자에 따라 다양하다. 작은 수로 존재하는 Listeria monocytogenes의 검출할 경우, 시험 검체를 증균배지에 접종해서 개체수를 증가시킨 후에 분리 및 동정을 수행해야 한다. Listeria Selective Medium 평판에 접종하기 전에, 시험될 검체의 종류에 따라서, 적절한 방법 및 선택적 증균 액체배지를 선택하는 것이 좋다.

1. 선택적 증균 액체 배지 0.1ml을 Listeria Selective Mdieum평판에 접종한다.

2. 48시간까지 35°C에서 배양한다.

3. 24시간, 48시간 배양후에 전형적인 집락을 시험한다.

Listeria monocytogenes로 추정적으로 동정된 집락들을 생화학적 및 혈청학적 검사로 확정해야 한다.23

참고: 배양온도를 30°C 또는 35~37°C에 하는가에 따라서, Listeria monocytogenes, Listeria seeligeri 및 Listeria ivanovii ​의 beta-lactam 항생제 및 fosfomycin에 대한 감수성에 차이가 있는 것으로 관찰되었다. 


품질관리(Quality Control)

Positive control: Expected results
Listeria monocytogenes ATCC® 7644 * 성장함; aesculin 가수분해가 있는 갈색 집락
Negative control:  
Entercoccus feacalis ATCC® 29212 * 성장 못함
* Culti-Loop 제품으로 구입가능


 

 

보관 및 유효기간

건조 분말 배지는 10~30°C에 저장하고 라벨 유효기간내에 사용

조제된 평판 배지는 2~8°C의 암소에 보관

 

성상

건조 배지: 짚색의 유동성 분말

조제 배지: 창백한 녹색의 젤

Listeria monocytogenes는 ACDP Group 2, 즉, "실험실 작업자에게 해로울 수 있다"이므로 적합한 환경에서만 다루어져야 한다. 

임산부 실험자는 Listeria 배양이 시행되는 것으로 알려진 작업에서 배제해야 한다.

acriflavine을 함유한 Listeria 배지는 차광해야한다. 광산화로 인해 Listeria를 억제하는 물질이 생성된다.

첨가제 SR0140은 인체에 독성 농도인 cycloheximide가 포함되어 있어 취급에 주의를 요한다. SR0206에는 독성의 cycloheximide가 Amphotericin B로 대체되어 있다.

설명(Description)

Listeria monocytogenes에 의한 식품유래 감염으로 인해 식품, 환경, 그리고 사람 및 동물 유래의 병원성 검체에서 이 미생물을 검출하기 위한 관심 증가가 가속화 되었다.

성인 감염의 대부분은 증상이 없고 장 및 생식기관에서의 보균을 초래한다. 임신 중 감염은 유산, 조산, 신생아 감염을 초래할 수도 있다. 리스테리아증의 가능성이 원인을 알 수 없는 반복적인 유산, 조기 진통, 태아 사망을 보이는 여성에서 고려되어져야 한다. 이 미생물은 혈액 배양 및 생식관 스왑을 통해 검출해야 한다1.

성인 및 신생아에서 가장 공통적인 임상적 양상은 수막염(meningitis)이다. 폭 넓게 퍼진 감염, 농양, 아 급성 세균성 심내막염(sub-acute bacterial endocarditis) 및 면역 억제 환자에서의 기회적 감염이 간혹 발생된다.

, 물고기, 그리고 기타 동물들은 모두 Listeria 감염에 감수성이 있다. 가축에서 특히 중요하다. 독일연방에서 동물에서 리스테리아증 발생 보고는 의무적이며 육류 조사법은 육류 위생에서의 중요성으로 인해 Listeria에 대한 검사를 요구한다.

Listeria monocytogenes는 환경에 많이 퍼져 존재한다. 우유2,3, 치즈4, 하수 및 하천수5, 목초6에서 분리되는 것으로 보고되었다. Listeria는 폭 넓게 퍼져있기 때문에 감염원이 많다. 조리되지 않은 채소가 관련되어 있다; 양배추 소비와 관련된 에피소드가 하수 비료(sewage fertilizer)를 사용하는 농장의 양배추와 관련되어 있다. 유제품으로 인한 발병에서 유선염에 걸린 소가 감염원일 수 있다. 수의사에게 중요한 것은 목초 제조업에서 업무의 변화에 주로 기인하여 유산 또는 뇌염으로 나타나는 양(sheep)에서의 감염이 상당히 증가한다는 것이다8.

리스테리아는 경쟁 군집에 의해 쉽게 완전히 성장 도태를 당하기 때문에 과거에는 효과적인 선택배지가 없어서 이 미생물을 분리하는 것 어려웠다.

Listeria Selective Medium (Oxford Formulation)Curtis 9이 기술한 조성에 기반하며 임상 및 식품 시료에서 Listeria monocytogenes의 검출에 권장된다.

이 배지의 다음을 활용한다:

(i) 선택적 억제 구성성분으로 lithium chloride, acriflavine, colistin sulphate, cefotetan, cycloheximide(또는 amphotericin B) 그리고 fosfomycin이 사용된다.

(ii) Listeria monocytogenes의 분리 또는 분별을 위해서 지시약 체계인 aesculin ferrous iron이 사용된다.

Listeria monocytogenesaesculin을 가수분해시켜, aglucon에서 유래하는 검정색 철 폐놀 화합물의 생성으로 인해 집락 주위에 검정색 영역을 만든다. 그람-음성 세균은 완전히 억제된다. 대부분의 원치않는 그람 양성 종들은 저해되지만 일부 enterococci의 균주들은, 일반적으로 40시간 배양 후에, 약하게 성장하고 약한 aesculin 반응을 보여준다. 일부 staphylococciaesculin 음성 집락으로 성장할 수 있다.

전형적인 Listeria monocytogenes 집락은 24시간 배양 후에 거의 항상 육안으로 볼 수 있다. 하지만 느리게 성장하는 균주들을 검출하기 위해서는 24시간 더 배양을 지속해야 한다.

 

분리 방법은 실험 저자와 사용된 물질에 따라 다양하다10,11. 모든 시료에 대해서 선택적 증균 및 냉증균이 분리율을 상당히 증가시키는 것으로 나타났다12,13,14. Listeria Selective Medium(Oxford Formulation)의 효율은 기존 문헌에 기술된 방법론을 따르고 선택적 증균 배지를 사용하여 다양한 식품들에 대해 확인되었다16,17,18,19. Oxford agarFDA/BAM 분리 방법20에서 그리고 기타 국가 및 세계적인 기관의 표준화된 시험 방법21에서 특정된 평판용 배지이다. Oxford agar baseAl-Zoreki Sandine에 의해서 ASLM agar를 위한 기본 배지로 사용되었다. ASLM agar는 선택제로서 ceftazidime, moxalactam, cycloheximide가 포함되어 있다22.

1. Lancet (1985 [2]) August 17. 364-365.
2. Hayes et al (1986) Appl. Env. Microbiol. 50. 438-440.
3. Fernandez Garayzabal J.F. et al (1986) Can. J. Microbiol. 32. 149-150.
4. James S.M., Ferrin S.L. and Agee B.A. (1985) MMWR 34. 357-359.
5. Watkins J. and Sleath K.P. (1981).
6. Gitter M. (1983) Vet. Rec. 112, 314.
7. Schlech W.F., Lavigne P.M. and Bortolussi R.A. (1983) N. Eng. J. Med. 308. 203-206.
8. Appleyard W. (1986) Communicable Diseases, Scotland. April 1986. CDS 86/13.
9. Curtis G.D.W., Mitchell R.G., King A. F. and Griffin E.J. (1989) Letters in Appl. Microbiol. 8. 95-98.
10. van Netten P., van de Ven A., Perales I. and Mossel D.A.A. (1988) Int. J. Food Microbiol. 6. 187-198.
11. Prentice G.A. and Neaves P. (1988) Bulletin of the International Dairy Federation No. 223.
12. Hayes P.S., Feeley J.C. Graves L.M., Ajello G.W. and Fleming D.W (1986) Appl. & Environ. Microbiol. 51. 438-440.
13. Garayzabal J.F.F. Rodriquez L.D., Boland J.A.V. Cancelo J.L.B. and Fernendez G.S. (1986) Can. J. Microbiol. 32. 149-150.
14. Doyle M.P., Meske L.M. and Marth E.H. (1985) J. of Food Protection, 48. 740-742.
15. Crowther J.S. (1988) Personal Communication, Unilever Research Laboratory, Colworth House, Sharnbrook, Bedford, U.K.
16. Neaves P. and Prentice G.A. (1988) Personal Communication, Technical Division, Milk Marketing Board, Thames Ditton, Surrey.
17. Lovett J., Francis D.W. and Hunt J.M. (1987) J. Food Prot. 50. 188-192.
18. Donelly C.W. and Baigent G.J. (1986) Appl. and Environ. Microbiol. 52. 689-695.
19. Hammer P., Hahn G. and Heeschen W. (1988) Deutsch Mock-Zeit. 50. 1700-1706.
20. Food and Drug Administration (FDA) Bacteriological Analytical Manual 7th Edition 1992, AOAC Int. Publishers Arlington V.A.
21. Foodborne Pathogens. Monograph Number 2 -- Listeria, page 7. Oxoid Ltd, Wade Road, Basingstoke, Hampshire, U.K.
22. Al-Zoreki N. and Sandine W.E. (1990) Appl. Env. Microbiol. 56. 3154-3157.
23. Bille J. and Doyle M.P. (1991) ``Listeria and Erysipelothrix’’, 287-295 in Balows A., Hauster W.J. Jnr., Herrman K.L., Isenberg H.D. and Shadomy H. J. (Editors), Manual of Clinical Microbiology, 5th Edition, American Society for Microbiology, Washington, D.C.
24. Curtis G.D.W., Nichols W.W. and Falla T.J. (1989) Letters in Appl. Microbiol. 8. 169-172. 

관련 기술 자료가 없습니다.